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DH5α電轉感受態(tài)細胞

DH5α電轉感受態(tài)細胞

簡要描述:DH5α電轉感受態(tài)細胞只能用于電擊轉化,不能用于熱激轉化。DH5α菌株是實驗室常用的感受態(tài)細胞。 缺失核酸內(nèi)切酶 (endA),提高了質粒DNA的產(chǎn)量和質量;重組酶缺陷型 (recA)減少插入片段的同源重組概率,保證了插入DNA 的穩(wěn)定性;lacZΔM15的存在使DH5α可用于藍、白斑篩選。

更新時間:2022-01-20

廠商性質:生產(chǎn)廠家

瀏覽次數(shù):961

詳情介紹
品牌其他品牌貨號BFNC86035
規(guī)格5x50ul/20x50ul供貨周期現(xiàn)貨
主要用途僅用于科研應用領域醫(yī)療衛(wèi)生,生物產(chǎn)業(yè)

DH5α電轉感受態(tài)細胞


產(chǎn)品規(guī)格CAT#: BFNC86035-01(5×50ul)/BFNC86035-02(20×50ul)

DH5α Electroporation-Competent Cell                  50μl/支

pUC19 (control vector,10pg/μl):                                10μl

保存條件(保質期):                                         -80℃(6個月)


基因型

F- φ80 lac ZΔM15 Δ(lacZYA-arg F) U169 endA1 recA1 hsdR17(rk-,mk+) supE44λ- thi -1 gyrA96 relA1 phoA




產(chǎn)品說明

DH5α電轉感受態(tài)細胞只能用于電擊轉化,不能用于熱激轉化。DH5α菌株是實驗室常用的感受態(tài)細胞。 缺失核酸內(nèi)切酶 (endA),提高了質粒DNA的產(chǎn)量和質量;重組酶缺陷型 (recA)減少插入片段的同源重組概率,保證了插入DNA 的穩(wěn)定性;lacZΔM15的存在使DH5α可用于藍、白斑篩選。

青旗生物生產(chǎn)的DH5α電擊感受態(tài)細胞經(jīng)特殊工藝制作,pUC19質粒檢測轉化效率可達1×1010 cfu/μg DNA。


DH5α電轉感受態(tài)細胞


操作方法

1. 0.1cm 電擊杯和杯蓋從儲存液中拿出倒置于干凈的吸水紙上5分鐘,待其瀝干水分,正置5分鐘,使乙醇充分揮發(fā),待乙醇揮發(fā)干凈立即插入冰中,壓實冰面,電極杯頂離冰面0.5 cm以方便蓋上杯蓋,冰中靜置5分鐘充分降溫。

2. -80℃保存的DH5α電擊感受態(tài)細胞插入冰中5 分鐘,待其融化,加入目的DNA (質粒或連接產(chǎn)物)并用手bo打EP管底輕輕混勻,避免產(chǎn)生氣泡,立即插入冰中。

A. 測定轉化效率使用1 μl 10 pg/μl的對照質粒 pUC19;

B. 對于連接產(chǎn)物,請用乙醇沉淀DNA后加入適量TE緩沖液 (10mM Tris HCl, pH7.5; 1mM EDTA)重懸,DNA濃度不超過100ng/μl,體積不超過5μl/50μl 感受態(tài)。

3. 200 μl槍頭將感受態(tài)-DNA混合物快速移到電擊杯中,避免產(chǎn)生氣泡,蓋上杯蓋。

4. 啟動電轉儀,設置參數(shù):C=25 μF,PC=200 Ω,V=1.8 kV (此為BioRad 電轉儀推薦參數(shù),也可按所用電轉儀推薦的參數(shù)操作),將電擊杯快速放入電轉槽中,電擊完成快速插入冰中。

5. 2分鐘后從冰中取出電擊杯,放室溫,加入700 μl不含抗生素的無菌S.O.C. 培養(yǎng)基(室溫),用1ml槍吹吸電擊杯底部數(shù)次混勻后,轉移到50ml離心管(BD Falcon50ml錐形離心管等),向離心管中補加S.O.C. 培養(yǎng)基至5ml。37℃,225 rpm復蘇60分鐘。

6. 5000rpm離心一分鐘收菌,重懸后取100-200 μl涂布到含相應抗生素的S.O.C平板上(因菌量較大,若全部涂板請選用直徑15cm培養(yǎng)皿2-5個)。將平板倒置放于37℃培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng)13-17小時。


S.O.C 培養(yǎng)基配方

2% Tryptone

0.5% Yeast Extract

10 mM NaCl

2.5 mM KCl

10 mM MgCl2

10 mM MgSO4

20 mM glucose

PH-7.0

S.O.C. Medium is suitable for use in the final step of cell transformation to obtain maximal transformation efficiency of E. coli (Hanahan, 1983).


注意事項

1. 加入DNA時體積不應大于感受態(tài)體積的1/10

2. 電擊感受態(tài)細胞加入電擊杯應避免產(chǎn)生氣泡,氣泡會增加弧光放電風險。

3. DNA不純或存在鹽,乙醇,蛋白及緩沖液等污染時,轉化效率急劇下降。

4. 電擊杯里的離子可增加溶液的電導,增大在含有細胞和DNA的溶液中產(chǎn)生電流和弧光放電的風險。

5. 若轉化大質?;蛳氆@得較高轉化效率,推薦使用高純質粒提取試劑盒提取質粒。質粒增大一倍,轉化效率下降一個數(shù)量級。

6. 對于連接產(chǎn)物轉化,請轉化前乙醇沉淀DNA后用適量TE緩沖液 (10 mM Tris HCl, pH7.5; 1 mM EDTA)重懸產(chǎn)物,保證DNA濃度不超過100 ng/μl。過高濃度連接產(chǎn)物或過大體積連接產(chǎn)物會降低轉化效率,增加弧光放電的風險。

7. 混入質粒時應輕柔操作,吸取感受態(tài)細胞時不可用孔徑過小的槍頭 (普通200ul槍頭應剪去槍頭尖0.6cm) 避免用力過猛,以免剪切力過大損傷細胞膜,降低轉化效率。轉化高濃度的質?;蜻B接產(chǎn)物可相應減少終用于涂板的菌量。


8. 電擊感受態(tài)細胞盡量保存在-80℃以下,高于-80℃超期儲存會導致轉化效率會下降。





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